Presencial

Curso teórico-prático que visa capacitar o candidato nas técnicas de criação, manutenção e controle de culicídeos vetores (como Aedes aegypti e Culex quinquefasciatus), bem como prepará-lo para atuação em campanhas de divulgação científica no âmbito do combate a doenças como Dengue, Zika, Chikungunya e Filariose. A parte teórica será realizada com aulas exposivas dos temas: 1) Biologia geral de Culicídeos Vetores; 2) Embriogênese de Culicídeos Vetores; 3) Controle de Culicídeos Vetores; 4) Dengue, Zika e Chikungunya; 5) Identificação de criadouros convencionais e não convencionais. No que tange à parte prática, o curso visa capacitar o candidato na criação e manutenção de colônias de mosquitos vetores, na obtenção de postura de ovos sincronizados, na disecção de órgãos de mosquito (ovário, oviduto, espermateca) e na análise de morfologia embrionária. A avaliação final do curso será feita através de relatório escrito das atividades e apresentação de seminário para os demais membros do LABIMI. 

O curso tem por objetivo discutir os principais aspectos relacionados ao planejamento, execução e análise de dados de estudos de coorte observacionais, com base no desenvolvimento de um estudo de coorte multicêntrico, o Estudo Longitudinal de Saúde do Adulto (ELSA-Brasil). Serão também abordados os fundamentos para a análise de mediação, utilizando técnicas estatísticas de equações estruturais em dados longitudinais. Espera-se que ao final do Curso o aluno esteja capacitado (i) a discutir a experiência de desenvolvimento e os desafios de sua execução e manutenção da coorte, priorizando aspectos práticos e metodológicos e (ii) a interpretar os resultados de estudos longitudinais através de análises de equações estruturais. A avaliação do aluno será feita através da apresentaç

Neste curso teórico-prático, o aluno aprenderá noções sobre Ritmos Biológicos e como os diferentes comportamentos são gerados. A parte prática envolve a realização de ensaios de análise locomotora/voa em fêmeas de Aedes aegypti infectadas com pelo menos uma das arboviroses circulantes no país. Para isso, o aluno deverá ser capaz de: i) criar mosquitos em condições padrão, desde os ovos até os adultos; ii) produzir protocolos experimentais para estudos de ritmos circadianos; iii) entender os diferentes tipos de infecção artificial. A avaliação final do curso será feita através de relatório escrito das atividades e apresentação de seminário para os demais membros do LABIMI. 

Curso de natureza teórico-prática com carga horária de 20 h semanais. O curso tem como foco a caracterização bioquímica de peptidases em fungos e avaliação do efeito de inibidores proteolíticos com potencial terapêutico no crescimento celular e morfogênese fúngica. Principais assuntos a serem abordados: conceitos básicos em micologia geral; técnicas de preservação de células fúngicas; obtenção e concentração de proteínas bioativas; técnicas de dosagens enzimáticas: método colorimétrico e fluorimétrico; técnica de eletroforese em gel de poliacrilamida; zimografia; teste de sensibilidades a antifúngicos, incluindo determinação da concentração inibitória mínima e fungicida mínima. Como critério de avaliação será considerado como nota final o somatório: desempenho e participação do aluno (valor 1,0 ponto), seminários (valor 4,0 pontos) e prova objetiva (valor 5,0 pontos). 

O curso é de caráter teórico-prático e tem como objetivo formar alunos de graduação em atividades de pesquisa com enfoque na área de biologia celular. Os alunos selecionados estarão vinculados a um subprojeto de pesquisa que abordará aspectos da interação Trypanosoma cruzi - célula alvo, que permitirá a formação dos alunos em análises de parâmetros da interação relevantes (percentual de infecção, cálculo de índice endocítico e ensaios de competição) e ainda, análise de vias de sinalização ativadas durante invasão do T. cruzi, principalmente quinase de adesão focal (FAK), visando avaliar a expressão e localização subcelular das proteínas efetoras. O curso formará alunos em diferentes técnicas e metodologias tais como: (i) boas práticas de laboratório. Biossegurança e qualidade; (ii) técnicas de cultivo celular (cultura primária de células musculares cardíacas e macrófagos peritoneiais murino assim como manutenção de linhagens celulares, incluindo células vero, LLCM-K2 e L6E9); (iii) ensaios bioquímicas (extração e dosagem de proteínas, SDS-PAGE e western blotting); (iv) microscopia óptica (contraste de fase, DIC e fluorescência e (v) aquisição e edição de imagens pelo programa Adobe Photoshop. Os alunos serão avaliados por diferentes parâmetros: (i) entrega de relatório final; (i i) apresentação de seus resultados através de seminários; (iii) desempenho das atividades teóricopráticas e (iv) assiduidade ás aulas. 

O conteúdo das aulas teóricas e práticas têm como objetivo capacitar o aluno a identificar alterações teciduais causadas no molusco após a exposição ao herbicida. O aluno fará toda a execução do processo de infecção ao S.mansoni e exposição ao herbicida no laboratório assim como acompanhamento do material a ser desidratado, diafanizado e impregnação com a parafina líquida seguida da inclusão e coloração. Após a execução 'desse material, o aluno fará a leitura e interpretação das lâminas. O aluno terá também corno atividade atualização da bibliografia que servirá como suporte para o trabalho. O método de avaliação será a frequência e apresentação de seminário.  

Este curso tem como objetivo formar alunos de graduação na área de Biologia Celular e Molecular para estudar aspectos importantes da biologia da infecção de células do Sistema Nervoso Central pelo parasito Toxoplasma gondii. Neste programa os alunos selecionados aprenderão a manipular culturas de células de mamíferos (neuroblastos, astrócitos e neurônios), fixação e processamento para modalidades de microscopia óptica (imunofluorescência e microscopia de campo claro) e eletrônica, seguido da análise das amostras e interpretação dos resultados. Métodos moleculares serão empregados para estudar alterações na expressão gênica e protéica em células infectadas. Utilizaremos técnicas de RT-PCR quantitativo, Western blotting e co-imunoprecipitação (esta última, com intuito de estudar interações proteína-proteína). Ao final deste módulo, os alunos serão capazes de formular e realizar experimentos com independência, desde o preparo e cultivo das células, indução de diferentes tratamentos, processar para microscopia ou extrair proteínas ou ácidos nucléicos e proceder com as diferentes abordagens citadas acima. Haverá uma avaliação final que constará de um seminário a ser apresentado à equipe do Laboratório, contendo discussão de artigos publicados e também os resultados obtidos pelo aluno no período, seguido de arguição. 

Neste curso o aluno estudará a literatura referente à biologia reprodutiva de insetos, mais especificamente as informações existentes sobre o comportamento reprodutivo de mosquitos vetores. O aluno aprenderá a pesquisar e formular perguntas que possam ser respondidas através de um experimento de curta duração, cujos resultados ajudem a ampliar o conhecimento sobre os ritmos circadianos de atividade relacionada com a reprodução. Além da base teórica, o curso incluirá aulas práticas, onde o aluno aprenderá: 1) criação e manutenção de colônias de mosquitos vetores no laboratório, 2) montagem de equipamento para estudo de atividade locomotora ligada à reprodução, 3) análise de dados de atividade locomotora e interpretação de resultados. A avaliação final do curso será feita na forma de um relatório final, que deverá conter uma introdução resumida sobre o tema do curso, a metodologia aprendida e resultados do experimento proposto. O aluno deverá apresentar o relatório na forma escrita e também na forma de um seminário para os membros do laboratório.  

A Malacologia médica e sistemática, área reconhecidamente carente de profissionais no país, é o tema central do curso, que visa formar recursos humanos capazes de conjugar a taxonomia clássica com as ferramentas moleculares disponíveis atualmente na identificação de moluscos e helmintos.